Измерение объема тканевого блока с помощью биологических микроскопов
На сегодняшний день криофиксация, замороженные ультратонкие срезы и сублимационная-сушка являются обычными методами рентгеновской микроскопии тканей и клеток-. Пожалуйста, предоставьте следующую информацию об этом методе:
Биологический микроскоп с прожектором может перемещать прожектор вверх и вниз для достижения умеренной яркости, а апертуру переменной апертуры также можно изменять для достижения умеренной яркости. Если свет исходит от солнца, прожектор можно поднять соответствующим образом, а апертуру переменного света можно соответствующим образом увеличить. Если свет слишком яркий, прожектор можно соответствующим образом опустить, а апертуру перекрестка можно соответствующим образом уменьшить. Если в этой ситуации вы по-прежнему чувствуете себя ослепительно, вы можете разместить соответствующий фильтр на кронштейне под прожектором. Этот дуб может достичь яркости, которая вас удовлетворит. Конечно, регулировка верхнего и нижнего положения прожектора позволяет изменить размер апертуры светового показания и подобрать подходящие фильтры, что требует определенного периода практики и опыта.
Очень важным вопросом биологической микроскопии является процесс отбора и выделения клеток. После сублимационной сушки и заливки смолой (FD) замороженные ультра-тонкие срезы необходимо тщательно обработать, чтобы гарантировать, что содержание 65 элементов в каждой части не будет повреждено во время наблюдения и анализа. Из-за большого количества этапов и высокой стоимости рентгеновского микроанализа прискорбно делать неправильные выводы, если анализируемые клетки повреждены или мертвы после длительной и многоэтапной-обработки. Клетки миокарда, разделенные обработкой желатиназой, имеют две формы: одну — длинную палочковидную, а другую — круглую. Последнее относится к умирающим клеткам, которые повреждаются в процессе разделения клеток.
Содержание и распределение электролитов в этих двух типах клеток под биологическим микроскопом сильно различаются. В круглых кардиомиоцитах концентрация Na очень высока, а K чрезвычайно низка, а в линейных дендритах концентрация Ca очень высока. После проверки другими аналитическими методами было доказано, что высокий уровень Na и низкий уровень K в круглых клетках и высокий уровень Ca в митохондриях являются результатом повреждения мембран во время разделения клеток. Метод холодной фиксации клеток и тканей часто предполагает сначала их закалку, а затем хранение в жидком азоте. Закалочная фиксация имеет решающее значение для эффекта консервации. Живые клетки или свежие ткани богаты водой, и при закалке части клеток или тканей, вступающие в непосредственный контакт с хладагентом (особенно при использовании жидкого азота для охлаждения), часто замораживаются и фиксируются первыми, образуя «оболочку», препятствующую раздавливанию и фиксации центральной части клеток. Поэтому при проведении рентгеновского микроанализа часто обнаруживают, что кристаллы льда присутствуют в центральной части более крупных клеток. Чтобы не допустить такой ситуации, в качестве хладагента используется вещество с температурой плавления выше жидкого азота, но ниже на 806С. Таких веществ много, но их легко получить и самым доступным является концентрированный пропан (температура кипения 42,120С, температура плавления 187,10С, молекулярная масса 44,1), который также имеет быструю скорость охлаждения. Но его недостаток в том, что он горюч.
